Libélulas y caballitos del diablo del departamento del Meta, Colombia
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Fredy Palacino Rodríguez . Libélulas y caballitos del diablo del departamento del Meta, Colombia
Tabla de contenido //
Introducción
Cap. 1. Capítulo 1 // Generalidades sobre el área de estudio
Descripción de localidades
Aspectos generales de las libélulas y caballitos del diablo (orden Odonata)
Hábitat
Alimentación
Ciclo de vida
Coloración
Reproducción
Enemigos naturales y mecanismos de evasión
Diversidad, taxonomía y aspectos filogéneticos
Conservación de libélulas en el Departamento del Meta
Futuros estudios sobre libélulas de los Llanos Orientales
Morfología general
Cabeza
Tórax
Abdomen
Cap. 2. Capítulo 2 // Libélulas y caballitos del diablo del Meta
Cómo usar esta guía
Aspectos de la recolección (Ramírez, 2010)
Familias de libélulas en el Meta
Clave para las familias de Odonata reportadas en el Meta
Dicteriadidae (Silsby, 2001)
Heleocharis amazona (Selys, 1853)
Polythoridae (Silsby, 2001)
Cora xanthostoma (Ris, 1918)
Euthore fasciata plagiata (Selys, 1873)
Polythore gigantea (Selys, 1853)
Polythore procera (Selys, 1869)
Calopterygidae (Silsby, 2001)
Hetaerina caja (Drury, 1773)
Hetaerina capitalis (Selys, 1873)
Hetaerina occisa (Hagen in Selys, 1853)
Hetaerina sanguinea (Selys, 1853)
Lestidae (Silsby, 2001)
Lestes forficula (Rambur, 1842)
Lestes jerrelli (Tennessen, 1997)
Megapodagrionidae (Silsby, 2001)
Heteragrion breweri (De Marmels, 1989)
Mesagrion leucorrhinum (Selys, 1885)
Teinopodagrion caquetanum (Selys, 1853)
Protoneuridae (Silsby, 2001)
Neoneura sylvatica (Hagen in Selys, 1886)
Psaironeura remissa (Calvert, 1903)
Perilestidae (Silsby, 2001)
Perilestes kahli (Williamson & Williamson, 1924)
Pseudostigmatidae (Silsby, 2001)
Mecistogaster linearis (Fabricius, 1776)
Mecistogaster ornata (Rambur, 1842) (T3)
Megaloprepus coerulatus (Drury, 1782)
Platystictidae (Esquivel, 1997; Silsby, 2001; Garrison et al., 2010)
Palaemnema clementia (Selys, 1886)
Coenagrionidae (Silsby, 2001)
Acanthagrion apicale (Selys, 1876)
Acanthagrion obsoletum (Förster, 1914)
Argia dives (Förster, 1914)
Argia oculata (Hagen, 1865)
Argia pulla (Hagen in Selys 1865)
Argia translata (Hagen in Selys, 1865)
Homeoura chelifera (Selys, 1876)
Ischnura capreolus (Hagen, 1861)
Ischnura ramburii (Selys, 1850)
Mesamphiagrion laterale (Selys, 1876)
Neoerythromma cultellatum (Hagen, 1876)
Telebasis corallina (Selys, 1876)
Telebasis dunklei (Bick and Bick, 1995)
Telebasis filiola (Perty, 1834)
Telebasis griffinii (Martin, 1896)
Telebasis inalata (Calvert, 1961)
Telebasis rubricauda (Bick & Bick, 1995)
Telebasis salva (Hagen, 1861)
Telebasis williamsoni Garrison (2009)
Aeshnidae (Silsby, 2001)
Anax amazili (Burmeister, 1839)
Coryphaeschna adnexa (Hagen, 1861)
Coryphaeschna viriditas (Calvert, 1952)
Gynacantha nervosa Rambur (1842)
Remartinia luteipennis (Burmeister, 1839)
Rhionaeschna cornigera (Brauer, 1865)
Rhionaeschna marchali (Rambur, 1842)
Rhionaeschna psilus (Calvert, 1947)
Staurophlebia reticulata (Burmeister, 1839)
Gomphidae (Silsby, 2001)
Ebegomphus conchinus (Williamson, 1916)
Phyllocycla sp
Progomphus pygmaeus (Selys, 1873)
Libellulidae (Silsby, 2001)
Anatya guttata (Erichson, 1848)
Brachymesia furcata (Hagen, 1861)
Brachymesia herbida (Gundlach, 1889)
Brechmorhoga praecox (Hagen, 1861)
Brechmorhoga rapax (Calvert, 1898)
Cannaphila vibex (Hagen, 1861)
Diastatops intensa (Montgomery, 1940)
Dythemis nigra Martin, 1897
Dythemis sterilis (Hagen, 1861)
Elasmothemis cannacrioides (Calvert, 1906)
Erythemis credula (Hagen, 1861)
Erythemis haematogastra (Burmeister, 1839)
Erythemis peruviana (Rambur, 1842)
Erythemis plebeja (Burmeister, 1839)
Erythemis vesiculosa (Fabricius, 1775)
Erythrodiplax abjecta (Rambur, 1842)
Erythrodiplax attenuata (Kirby, 1889)
Erythrodiplax basalis (Kirby, 1897)
Erythrodiplax castanea (Burmeister, 1839)
Erythrodiplax fervida (Erichson, 1848)
Erythrodiplax fusca (Rambur, 1842)
Erythrodiplax umbrata (Linnaeus, 1758)
Erythrodiplax unimaculata (De Geer, 1773)
Libellula herculea (Karsch, 1889)
Macrothemis hemichlora (Burmeister, 1839)
Macrothemis inacuta (Calvert, 1898)
Miathyria marcella (Selys in Sagra, 1857)
Micrathyria ocellata (Martin, 1897)
Nephepeltia flavifrons (Karsch, 1889)
Nephepeltia phryne (Perty, 1834)
Orthemis cultriformis (Calvert, 1899)
Orthemis discolor (Burmeister, 1839)
Pantala flavescens (Fabricius, 1798)
Pantala hymenaea (Say, 1839)
Perithemis domitia (Drury, 1773)
Perithemis electra (Ris, 1930)
Perithemis lais (Perty, 1834)
Perithemis mooma (Kirby, 1889)
Perithemis thais (Kirby, 1889)
Rhodopygia cardinalis (Erichson, 1848)
Tholymis citrina (Hagen, 1867)
Tramea binotata (Rambur, 1842)
Tramea calverti (Muttkowski, 1910)
Tramea cophysa (Hagen, 1867)
Uracis fastigiata (Burmeister, 1839)
Uracis imbuta (Burmeister, 1839)
Zenithoptera fasciata (Linnaeus, 1758)
Listado de especies
Bibliografía
Autores. Fredy Palacino Rodríguez
Fredy Cornelio A. Bota Sierra
Fredy Catalina Amaya Perilla
Fredy Natalia Andrea Contreras
Отрывок из книги
• Introducción
Capítulo 1
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En el Neotrópico se encuentra la mayor diversidad de odonatos del mundo y Colombia es uno de los países que más especies aporta con casi 400 (FPR, CABS, datos no publicados), lo cual hace que su identificación se vuelva una tarea realmente complicada en muchos de los casos; sin embargo, presentaremos a continuación información clave para aproximarse a este fascinante grupo. Los primeros registros para la fauna odonatológica del Meta fueron realizados por Calvert (1898, 1909) y Ris (1918). Desde entonces, la fauna ha sido muestreada, especialmente en la zona noroccidental del departamento. Recientemente, muestreos sistemáticos en varias localidades registraron el 40 % de las especies del país y una diversidad que se concentra en sistemas lénticos de la sabana. No obstante, más estudios deben desarrollarse para reconocer la diversidad del departamento, por ejemplo, es poco lo que conoce de la parte suroriental y de La Macarena, para la cual se registran apenas unas veinte especies, desde las recolectas de Leopold Richter en 1945.
Meta es uno de los departamentos más extensos y diversos del país, no obstante, la economía regional y el sostenimiento de las comunidades locales se basan en la explotación intensiva y cada día más extendida de actividades agrícolas, pecuarias e industriales, a lo que se suma la urbanización para asentamientos humanos. Dichas actividades vienen modificando irreparablemente los hábitats y generando un paisaje fragmentado (figs. 20a y 20b), que se convierte en un reto para la supervivencia de muchas especies, donde las libélulas no constituyen una excepción, especialmente aquellas especies que requieren de ambientes bien conservados. Es necesario y urgente desarrollar estudios con miras a establecer cuál es el impacto de los cambios que sufren los hábitats de la región, sobre las poblaciones de libélulas asociadas para generar información que permita tomar decisiones en torno a la preservación y conservación de algunos hábitats y las comunidades de organismos asociadas a ellos.
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